产品信息:
• 检测类型:定量检测
• 产品规格:100测试
• 适用样品类型:对各种基因及细胞治疗产品的慢病毒载体制备中残留的质粒DNA进行分析。
• 线性范围:4.97×101~4.97×106 copies/μL;R2≥0.990;扩增效率为94.3%
• 样品回收率:50-150%
• LLOQ:9.94 copies/μL
• 专属性:不受CHO、E.coli、Vero、HEK293、毕赤酵母等常见工程细胞基因组DNA的干扰。
• 精密度:中间精密度及重复性实验CV值均在30%以内。
• 耐用性:至少反复冻融5次检测性能不受影响。
• 仪器适用性(包括但不限于以下设备):湖州申科SHENTEK-96S、Bio-Rad CFX-96、Thermo ABI7500、Roche LightCycler480、耶拿qTOWER3G
产品特点:
• 操作简单:搭配SHENTEK前处理设备及试剂盒,可实现自动化提取及检测。
• 灵敏度高:定量下限低至9.04 copies/μL,满足实际检测需求。
• 性能稳定:试剂盒重复实验间结果稳定,均满足精密度需求。
• 质量可控:试剂盒按照药典、法规完成各项检测指标的性能验证。
质量保证:
• 建立ISO13485质量管理体系,具有完善的从研发、生产、质检的产品开发流程。
• 生产高度设备化,历史多批次生产稳定,供应链完善。
SHENTEK®质粒DNA 残留检测试剂盒用于定量检测基因治疗产品中质粒DNA 残留的专用检测试剂盒,如 CAR-T 细胞治疗中慢病毒载体制备相关的质粒 DNA。
本试剂盒利用 Taqman 探针原理,通过各质粒共有 DNA 序列, 如 ColE1/pMB1/pBR322/pUC 来源的复制子,定量检测样品中质粒 DNA 的残留。客户可以事先将质粒 DNA 序列给本公司技术人员进行确认。本试剂盒检测快速,专一性强,性能可靠,最低检测限可以达到 102 copies/μL。试剂盒配套有质粒 DNA 定量参考品。本试剂盒与 SHENTEK®宿主细胞残留 DNA 样本前处理试剂盒配套使用,可准确定量样品中残留的微量质粒 DNA。
100 Reactions。
规定储存条件下 24 个月,具体详见试剂盒标签。
Ø SHENTEK-96S 实时荧光 PCR 检测系统
Ø 7500 Real-Time PCR System
Ø CFX96 定量 PCR 系统
Ø Linegene 9600 定量 PCR 系统
Ø 1.5 mL 无菌离心管
Ø 96 孔 qPCR 板或八联管
Ø 1000 μL,100 μL,10 μL 无菌低吸附带滤芯枪头
Ø 荧光定量 PCR 仪
Ø 迷你离心机
Ø 漩涡振荡器
Ø 1000 μL,100 μL,10 μL 移液枪
v Plasmid DNA 定量参考品的稀释和标准曲线的制备
Plasmid 线性化DNA 定量参考品:将 Plasmid 线性化DNA 定量参考品快速离心 15 s,准确移取 55 μL ddH2O 加至管底,溶解冻干粉。
为保证冻干粉充分溶解,轻弹数下混匀,短时间快速离心 3-5 s,如此重复 3 次,再静置 10 min 后使用。
用试剂盒中提供的 DNA 稀释液将定量参考品进行稀释,具体操作如下:
1. 将试剂盒中的定量参考品和 DNA 稀释液置于冰上或 2-8 ℃条件下。待完全融化后,轻弹数下混匀,短时间快速离心 3-5 s,如此重复 3 次。
可根据自身样品结构特性选择线性化或非线性化 Plasmid DNA 定量参考品配制标曲。
2. 如使用 Plasmid 非线性化 DNA 定量参考品,取 7 支干净的 1.5 mL 离心管,分别标记为 ST、ST0,ST1,ST2,ST3,ST4,ST5。如使用 Plasmid 线性化 DNA 定量参考品,则取 8 支干净的 1.5 mL 离心管,分别标记为 ST,ST0,ST1,ST2,ST3,ST4,ST5, ST6。
3. 在 ST 管中用 DNA 稀释液将定量参考品稀释至 4.97×108copies/μ,得到 ST,振荡混匀短时间快速离心 3-5 s,重复 3 次。再在 ST0 管中用 DNA 稀释液将 ST 稀释 10 倍,得到 ST0,振荡混匀后短时间快速离心 3-5 s,重复 3 次以确保定量参考品与 DNA 稀释液充分混匀。
4. 在 ST1,ST2,ST3,ST4,ST5,ST6 管中分别加入 90 μL DNA 稀释液。
5. 按表 2 依次进行 5 次稀释操作。
已融化未使用的 DNA 稀释液可保存于 2-8 ℃。
若 DNA 稀释液中有析出,建议于 37 ℃条件下进行孵育。
标准曲线浓度点可根据实际验证结果选择,应至少有 5 个浓度点。
根据实验设置阴性质控,具体操作如下:
1.取 100 μL DNA 稀释液加入 1.5 mL 干净的离心管中标记为阴性质控 NCS。
阴性质控 NCS 和同批待测样品一起进行样品前处理步骤,制备成阴性质控 NCS纯化液。
1. 根据所要检测的标准曲线及待测样品数量,计算所需反应孔数,一般做 3 个重复孔/样。
2. 根据反应孔数计算本次所需的 qPCR MIX 总量(含有 2 孔的损失量):
3. 各试剂置于冰上或 2-8 ℃条件下融化,轻微振荡混匀,按表 3 所示配制:
4. 上述试剂混匀,按表 4 所示加样:
加样完成后每孔总体积为 30 μL。
NCS 和待测样品均需做 IPC 检测,根据表 5 和表 6 配制。
加样完成后每孔总体积为 30 μL。
该示例表示的是检测 5 个浓度梯度的质粒 DNA 标准曲线(ST1-ST5)、1 个无模板对照 NTC、1 个阴性质控 NCS、2 个待测样品(S1,S2)、NCS 的 IPC(IPC-NCS)和待测样品的 IPC(IPC-S1,IPC-S2)。建议做 3 个重复孔。
实际检测时可根据样品多少,参照此示例进行 96 孔板排版加样。
将 96 孔板用光学膜封闭,轻微震荡混匀,短时间快速离心 10 s 后放入 qPCR 仪。
² SHENTEK-96S 实时荧光 PCR 检测系统、软件版本 8.2.2 为例。
1. 点击“实验向导”。
2. “孔板编辑”页面中选择质粒非线性化检测反应孔,选择步骤 2 项目中的“质粒非线性化残留 DNA-FAM ”程序;或在“孔板编辑”页面中选择质粒线性化检测反应孔,选择步骤 2 项目中的“质粒线性化残留 DNA-FAM ”程序。选择检测荧光基团 VIC 样品反应孔,选择步骤 2 项目中的“质粒残留 DNA-IPC”程序。
3. “实验运行”页面中点击“开始”运行程序。
其他定量 PCR 系统程序设置如下:
选择 FAM 通道代表 Plasmid 质粒检测信号,选择 VIC 通道代表 IPC 检测信号。
1. 创建空白新程序,选择绝对定量检测模板。
2. 创建新检测探针,命名为 plasmid-DNA,选择报告荧光基团为 FAM,猝灭荧光基团为 none。创建新检测探针,命名为 IPC,选择报告荧光基团为 VIC,猝灭荧光基团为 none;检测参比荧光为 ROX(可选)。
² 以 SHENTEK-96S 实时荧光 PCR 检测系统、软件版本 8.2.2 为例。
1. “孔板编辑”页面中步骤 3:定义反应孔,将标准曲线孔的选择样品类型设置为标准品,并在标品赋值中分别根据表 2 赋值,如非线性 DNA 标准曲线设为 2.98e+006、 2.98e+005、2.98e+004、2.98e+003、2.98e+002(单位为 copies/μL),并且在相应的“样本名称”中命名为 ST1、ST2、ST3、ST4、ST5。
2. 待测样品将样品类型设置为待测样品,NTC 将样品类型设置为无模板对照。
3. 在“实验分析”页面点击,可读取标准曲线的斜率、截距、相关系数、扩增效率。
4. 在“反应孔信息表中”可读取无模板对照 NTC、阴性质控 NCS、待测样品的检测值,单位为 copies/μL。
² 以 7500 Real-Time PCR System、软件版本 1.4 为例。
1. 在 Results 的 Amplification Plot 面板中,将 Threshold 设置为 0.02,点击 Analyze,此时可初步查看扩增曲线的形态是否正常。
2. 在Results 的Plate 中,将标准曲线孔的 Task 一栏设置为Standard,并且在 Quantity一栏分别根据表 2 赋值,非线性 DNA 标准曲线设为 2.98e+006、2.98e+005、2.98e+004、 2.98e+003、2.98e+002(单位为 copies/μL),并且在相应的 Sample Name 一栏中命名为 ST1、ST2、ST3、ST4、ST5。线性 DNA 标准曲线则设为 4.97e+006、4.97e+005、4.97e+004、 4.97e+003、4.97e+002、4.97e+001(单位为 copies/μL),并且在相应的 Sample Name 一栏中命名为 ST1、ST2、ST3、ST4、ST5、ST6。
3. 在 Results 的 Plate 面板中,将无模板对照 NTC 孔的 Task 一栏设置为 NTC,将阴性质控 NCS 孔、待测样品孔的 Task 一栏设置为 Unknown,并且在相应的 Sample Name一栏中命名为 NTC、NCS、S,之后点击。
4. 在 Results 的 Standard Curve 面板中,可读取标准曲线的斜率(Slope)、截距(Intercept)、R2。
5. 在 Results 的 Report 面板中,Mean Quantity 一栏可读取无模板对照 NTC、阴性质控 NCS、待测样品,单位为 copies /μL。
6. 样品的Ct-IPC 值与NCS 的Ct-IPC 值要求在±1 个Ct 值范围内,如样品的 Ct-IPC值与 NCS 的 Ct-IPC 值相比明显增大,则表明样品可能有抑制。如同时测试加标样品,则优先考虑样品回收率结果,IPC 结果作为参考。
7. NTC 检测均值应不超过 10.61 copies/μL,或根据实验室自身验证结果设定具体标准。NCS 的 Ct 均值应大于标曲最低浓度 Ct 均值,若经验证的定量限浓度低于标曲最低浓度,则 NCS 的检测值应小于定量限浓度。
上述示例结果分析的参数设置仅供参考,具体需依据实验室机型及使用的软件版本进行设定,一般也可由仪器自动判读。
修订日期:2023 年 04 月 19 日
生效日期:2023 年 04 月 28 日
400-829-0116